临床常见标本采集范文第1篇
【摘要】 随着我国医学基础学科和边缘学科及科学技术日新月异的发展变化，医学检验的作用日益突显出来，临床检验工作在现代医学中的作用越来越重要，它对疾病的诊断、治疗及预后的判断都有十分重要的意义。而临床检验工作中的质量要求又是检验工作的核心，是直接反映临床检验工作的重要指标之一。
【关键词】 检验医学；临床检验；质量控制
临床检验是将病人的血液、体液、分泌物、排泄物和脱落物等标本，通过目视观察、物理、化学、仪器或分子生物学方法检测，并强调对检验全过程（分析前、分析中、分析后）采取严密质量管理措施以确保检验质量；从而为临床、为病人提供有价值的实验资料。临床检验是一门多学科互相渗透、交叉融合的综合性应用学科，涉及化学、物理学、生物学、生物化学、免疫学、微生物学、生理学、病理学、遗传学、分子生物学、统计学和多门临床医学等学科。
一、临床检验前阶段
1.严格做好查对制度，采血试管的标签上要填写清楚患者室科、姓名、住院号、床号，与申请单一致。根据不同检验项目，将标本注入不同的试管内。
2.血液标本采集时的注意事项：静脉采血应取坐位，使用止血带的时间不得超过1min，穿刺成功立即松开止血带，血液抽出后要沿着管壁慢慢注入到抗凝管或干净试管中。按检验项目加入特别规定的抗凝剂，如凝血酶原时间测定应加入3.8%枸橼酸钠，血常规标本中加入乙二胺四乙酸二钠抗凝。血液标本中抗凝剂比例要适当，如血沉标本按1：4抗凝。标本采集后放置时间不要超过2h；采集标本时要检查医嘱用药情况，如静脉用葡萄糖、氯化钾或口服药物等。
3.尿液标本留取时的注意事项：护理人员应指导住院患者正确留取尿液，容器应清洁干燥，避免经血、白带、精液、粪便等混入；标本应新鲜，以晨尿为宜，如放置时间过长，尿酮体中的乙酰乙酸易挥发，还应避光。尿培养标本应清洁外阴，无菌操作，留取中段尿或无菌穿刺膀胱留取尿液。
4.大便标本采集标本要求新鲜取有脓血或黏液部分，尽快送检，做潜血试验，应告诉患者3d内素食。禁服含铁药物和禁食含铁蔬菜等避免鼻血、牙龈出血、经血的影响；做细菌培养的标本应用无菌操作收集。
5.体液及分泌物标本留取时的质量控制：脑脊液标本采集后要立即送检，一般不能超过1h，因时间过长细胞易破坏或沉淀、糖分解、细胞溶解。痰标本收集时间应向患者说明检验目的和收集标本方法，痰液的一般检查应收集新鲜痰留取标本前用清水漱口3次之后用力咳出。咳痰较困难者可用雾化蒸气吸入以利痰液咳出。幼儿可用手指轻叩胸骨柄上方以诱发咳痰。
由于工作性质的不同，临床医护人员对检验工作影响因素不甚了解，在主观上没有引起重视，这是检验质量中最薄弱的环节。为了加强检验质量控制，笔者认为应定期与临床科室联系举办业务讲座，通过讲座使医护人员对检验技术有更深的了解。如各项指标的误差范围、误差来源、标本的正确采集等，完善各项规章制度，强化质量管理，重视检验质控实验室外部各环节的质量管理，达到预防和控制检验误差的目的。
二、临床检验过程
1.维护仪器：良好仪器是确保检验的关键，所以必须经强化仪器的维护。检验仪器维护要按规定做好日保养、周保养、月保养以及季保养，使仪器始终处于良好的工作状态。检验仪器在更换部件时一定要做好书面保养记录，从而有利于仪器发生故障时方便查询。
2.准备试剂：检验项目的试剂一定要按流程操作，要按试剂说明书来配制。暂时不用的试剂必须迅速放回冰箱中，以防止试剂挥发；对平时不经常使用的试剂，要观察其稳定性；对不符合检验要求的试剂，要及时更换。
3.分析过程中质量控制：临床检验作为一项以实验为基础的工作，一定要建立和完善客观全面的质量管理体系，从而使检验分析的全过程都处于规范受控的状态，这样才能使检验结果客观、准确、及时。一是要确保仪器应处于正常工作状态，做好室内、时间质控，一旦出现失控情况，必须要有失控的调查记录及改正措施。二是规范保存原始记录，要重视原始数据的法律效力，各项检验结果原始记录是检验工作的重要组成部分，不仅是检验结果的记载，也是最直接反映检测过程的数据资料。三是所有检验项目都应具有标准操作程序，此操作程序应该具备可操作性以及规范性、有效性
4.认真审核测定结果：目前的医学检验越来越系统化，越来越自动化，所以检验人员之间的配合也越来越多。无论是患者信息的录入、标本编号到分离、审核仪器操作检验结果、发送检验报告单以及结果信息反馈等各个环节都是一套环一套，上述各个环节都有可能出现瑕疵或者错误，这就要求检验人员必须要认真分析和核对检测结果，以便第一时间发现问题和错误，并及时改正。在此基础上，还要强化检验结果的分析比较，有效分析各参数之间关系，并与临床资料作分析比较，必要时还要深入临床一线，了解患者病情以及标本采集的具体情况，从而真正保证检测结果的合理、准确和有效。
5.建立报告单签收制度：建立健全严格的报告单签收制度，所有的检验报告单都应该由专人负责统一送达。检验科也要根据自身的实际情况，对检验报告单的室内保存时间、保存方法作出明确具体的规定，以便复查和核对。
6.做好结果分析和解释：一旦出现检验结果与临床诊断不相符合的情况，检验人员应及时和临床医生进行沟通，找准症结，摸清情况。随着医疗知识的普及，很多患者都希望知道自己病情和原因，所以会经常性让检验人员对自己的检验结果作出有关解释，检验人员应当有针对性地根据检验结果对病情进行客观全面地分析，这就要求检验人员在工作实践中，不断提升业务能力和专业知识。
三、临床检验后
临床检验结果的可靠性直接影响医疗质量。因此要保证检验结果可靠，必须实行全面的质量控制，即医学检验的质量保证。
检验后阶段又称分析后期，指的是检验后所有过程，包括对结果的审核、规范格式和解释、授权发布、结果报告、结果传递、检验后标本的保存。根据我国生物安全的管理要求，还包括实验室产生的医疗废弃物的处理。
1.加强检验结果审核，保证检验结果的有效性
检验结果核查的基本内容主要包括目前条码系统不是很完善，不要过分的依赖。该批检验结果发放前，应评价检验结果与患者有关信息的符合性。当出现疑问时，检查检测系统是否完整有效，仪器是否正常，人员有无更换。经审核后，决定发放结果，操作者与核查者双签字。
另外，实验室选用的项目及检验方法时，应考虑技术是否成熟；方法是否可靠；临床应用价值是否正确。检验项目有针对性，防止“过度检查”“漏检”的同时，实验室有责任建议或帮助选择。选择适当的控制品，定期校对。选择适合本实验室的室内质控规则。
2.重视检验后标本的储存
检验后标本储存的目的是为了必要的复查。临床实验室对检验后标本储存时间和方法作出规定，常规标本4c保存一周，特殊的标本3月-6月冷冻保存。废弃物按《医疗卫生机构废物管理办法》进行就地高压无害处理。
3.注意投诉调查与反馈
反馈检验结果在临床上的应用信息，及时发现实验室内无法解释的异常实验结果，即量值溯源的问题。质评人员通过定期的深入临床，收集并审阅相关资料，查找与临床不符或可疑的检验结果，并听取临床对检验结果可靠性的评价，解释医生疑问，将临床对实验建议及时反馈检验科内部，制定应对策略，提出纠正措施。通过外部质量评审来改进内部质量体系，同时加强了检验质量综合管理。
为了确保检验后阶段的质量控制顺利进行，根据需要，审核签发8小时之内的病房报告单，包括生化、免疫、PCR、临检（细菌）除外。根据生物安全管理的需要，化验单在清洁区打印，减轻了各专业组的工作强度。分析后质评岗位的设置是检验科主动跟踪自身结果数据质量的重要举措，不仅有助于联系临床，沟通相互信息，缓解和解决与临床的一些不必要的误会和矛盾，更有助于在质评中发现并解决自身质量问题，为临床患者提供更优质的服务，这是目前符合我国检验医学发展的有效补充，否则检验只能停留于各种项目的操作，游离于临床医学之外。
四、检验医学发展需要解决的问题
标准化和规范化
1.管理。在全球一体化的背景下，中国检验医学必须加速前进的步伐。申子瑜主任说，最重要的是加强管理和发展技术，管理要实现标准化和规范化。欧美等发达国家为此制定了相关法律和指导原则。我国临床实验室管理办法目前正加紧制定。
2.从检验角度讲，我国临床检验的准确性溯源长期以来一直未能得到解决，使用同类试剂出现不同的检验结果也就可以理解了。这也是各医院化验结果互不认可的重要原因之一。现在国际上很强调量值溯源，为试剂和检验结果制定统一标准，应该是未来的一个发展趋势。
3.员分工问题。我国检验人员的工作职能没有明确划分，技术员、本科生、硕士生和博士生从事同样的工作，没有体现出不同的价值，更不利于学科的发展。发达国家医学临床检验有严格的分工，有人专做实验，有人专做质量控制，有人专写报告与临床医生沟通等，这是值得我们借鉴的。
4.独立实验室也是一个重要的发展趋势。目前我国不同层次l检验地带网l的医疗机构提供的临床检验服务不在一个层面上。除少数大医院设备等硬件上可与国外相比，大部分县乡级医院不但设施很差，人员素质等软件差距就更大了。建立独立实验室不失为一条节省资金、保证质量的途径，有利于国家现有医疗资源的补充。
5.技术。目前检验设备正向大型化和小型化两个方向发展，一方面自动化、高通量大设备不断更新，另一方面床边化验设备和快捷诊断试剂也快速发展。自动化和分子生物学是检验医学未来发展的两个亮点，为临床个体化诊断和个性化治疗奠定了基础。
五、结语
检验医学对临床科室的服务将是我们工作中的重要环节，准确的检验结果离不开临床科室的支持与理解，而加强与临床的沟通与交流对话，主动与临床联系是必不可少的步骤。医学模式的转变使检验科的工作定位和观念发生了变化，要求实验室的工作更加密切地结合临床，不断地与临床医护人员进行学术交流和信息沟通，把有限的实验数据变为高效的诊断信息，更多，更直接地参与临床的诊断和治疗。
参考文献
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临床常见标本采集范文第2篇
1.临床微生物检验的思路和原则
确保标本可靠 ((分析前质量) 保证检验质量
全面了解机体的正常菌群 快速准确提供信息
微生物学的定性、定量和定位分析 结合病情，与临床联系
2.微生物结果的影响因素
2.1针对性的检验申请、病人准备、标本的采集、标本的运输 标本的保存和处理(46~68.2%); 标本检验 ( 415% ); 结果审核和批准、危急值报告(18.547%) 2.2正确采集、转运与保存微生物标本直接关系到致病微生物培养的正确性与阳性率，是从临床微生物检验获得正确结果的最关键一步。
2.3Garbage-In- Garbage-Out 不合格的标本-不正确的检验结果-错误的诊断-错误的治疗-卫生资源的浪费、病人费用增加、耐药菌株增加
2.4成功治疗感染症的重要前提: 正确的微生物学检验始自标本采取。否则工作人员水平再高也不可能得到正确的结果，临床医师、护士及检验人员都必须通晓其要领
3.标本采集前临床医师及护士要考虑的问题
3.1是否感染?细菌感染?真菌感染还是病毒、寄生虫感染? 3.2何时采集样本?
3.3采集什么样的标本?怎样采集?样本是否足量? 3.4采用哪种无菌容器或运送培养基采集标本?
3.5如何完善的填写标本申请单?针对某些特殊致病菌的排查要求应怎样写?(申请单信息越详尽，越有助于实验室出具符合临床情况的结果报告，如疑似诊断、准确的取材部位、甚至取样时用抗菌药物。) 3.6关键需要特别重视的问题：标本采集是否规范 ;标本保存、运送是否规范 ?;无菌体液培养重视与否?
4.微生物检查的样本收集原则：
4.1收集样本时应使用严格的无菌技术，将污染情形降至最低。
4.2收集真正感染的病灶处之样本，且不受到邻近区域微生物的污染。
4.3采用无菌卫材收集样本，并置于已贴有病患标签之坚固且密和性佳的容器中，将容器置于适当的储存环境待送。
4.4在病患感染的急性期、使用抗生素或伤口局部治疗前收集标本，成人应需氧瓶、厌氧瓶同时培养，以提高阳性检出率和避免漏检。
4.5样本不可添加防腐剂，以免干扰病原菌分离。
4.6于送检申请单上提供足够的有关临床资料(如姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等)，以便实验室能够合理选择培养环境和培养基;。 4.7即刻将样本送检，不可拖延，标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。不能使用冷藏的样本检验。
4.8实验室只能接受和处理合格标本;对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。 4.9厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。
5.血液培养标本采集和处理：
5.1采血指征：
对入院危重感染患者应在未进行抗菌药物治疗之前，及时做血培养。一般患者出现以下一种体征时可作为行血培养的重要指征：
①发热(≥38℃)或低温(≥36℃);②寒战;③白细胞增多(计数>10.0×109/L，特别有“核左移”时);④皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭，血压降低;⑤C反应蛋白升高及呼吸加快;⑥血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。
新生儿可疑菌血症，应同时做尿液和脑脊液培养。 5.2皮肤消毒程序：严格执行以下三步法。 5.2.1 70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
5.2.2 1%~2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向外划拳消毒，至消毒区域直径达3cm以上。 5.2.3 70%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用70%酒精消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。 5.3培养瓶消毒程序：①70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s;②用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精。 5.4静脉穿刺和培养瓶接种程序：
5.4.1在穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可戴乳胶手套固定静脉，不可接触穿刺点; 5.4.2用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头(如果行第二次穿刺，应换针头)直接注入血培养瓶，轻轻颠倒混匀防止血液凝固。立即送检，切勿冷藏。
5.5采血量：
成人采血量是8~10ml，儿童1~5ml。血液和肉汤之比为1:5~1:10。 5.6血培养次数和采血时间：
◆根据研究，仅抽血培养1次分离率约占80%，培养2次的分离率约占90%，而培养3次的分离率约占99%。仅抽血培养1次，除了分离率低(其原因是菌血症常会暂时消失)外，且将很难评估病原菌是污染还是与感染有关。如果抽血培养2次或3次，则能够得到肯定。
◆采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行，24h内应采集2~3次做血培养(一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养)。入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3d，每天采集2份。对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5~1h采集血液，或于寒战或发热后1h进行。
5.7特殊的全身性和局部感染患者采血培养的建议：
◆可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集2~3份血标本。
◆不明原因发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热，先采集2~3份标本，24~36h后估计体温升高之前(通常在下午)再采集2份以上。
◆可疑细菌性心内膜炎，在1~2h内采集3份血标本，如果24h后阴性，再采集3份以上的血标本。 5.8标本运送：
采血后应该立即送检，如不能立即送检，需室温保存或置35℃~37℃孵箱中，切勿冷藏。
6尿液标本采集和处理：
6.1采样原则：标本需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药物5天之后留取尿液标本;尿液在膀胱内应停留6～8 小时以上，使细菌有足够的时间繁殖。一般以清晨第一次的中段尿为宜。 6.2采集方法：
6.2.1中段尿采集法：：成年男性和女性分别用肥皂水或1：1000 高锰酸钾水溶液清洗尿道口和外阴部，再用无菌生理盐水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿5～10ml 盛于带盖的无菌容器内送检。
6.2.2导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检;长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿;留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检(不可采集尿液收集袋中的尿液送检);
6.3送检：尿液收集后，盖上容器盖子立即送检，若无法及时送检，置于4℃冰箱中保存不可超过2小时。 6.4注意事项：
◆收集尿液过程中，请勿将手伸入容器内，且尿液勿满出容器外，以免污染。而以无菌导管技术
收集尿液(特别是女性患者)的方法，已被认为不适合，因易引发尿道感染。 ◆如果同份标本中检出3种以上不同种微生物，可能由于采样本时受到污染所致。
7.痰及下呼吸道标本采集和处理：
7.1采集要点：所采集的痰标本，必须真正能代表肺部之分泌物者，通常清晨时痰液最多，且可能含较多病原菌。 7.2采集步骤如下：
7.2.1以清水或牙刷清洁口腔及牙齿，不可用牙膏。
7.2.2指导病患从呼吸道深部咳出痰(不可含有唾液)，装于无菌容器内。咳痰较困难者可用雾化蒸气吸入以利痰液咳出。幼儿可用手指轻扣胸骨柄上方以诱发咳痰。 7.2.3气管下采集法：通常用于在给患者行纤维支气管镜时顺便抽取。 7.2.4气管穿刺法：仅用于昏迷患者，由临床医师进行。
7.2.5痰标本应以脓样、干酪样或脓性粘液样性质的痰液为合格标本，痰量应为3~5ml。 7.2.6无法及时送检的痰标本应置于4℃冰箱中保存待送。
7.2.7呼吸道标本采集方法：鼻咽拭子法，先用清水漱口，对光坐，头向上仰，口张大，用压舌板轻压舌根，用棉拭子在病人咽后壁，悬雍垂后侧涂抹数次.立即放入无菌试管中。
7.3痰TB菌涂片采集：痰涂片检查TB菌的初诊病人应送3份痰标本(夜间痰、清晨痰和即时痰);如无夜间痰在留清晨痰后2~3小时再留一份痰标本，或送两份即时痰;治疗中或复诊随访病人按期每次送检两份痰(清晨痰和夜间痰)。
7.4痰标本采集说明：即时痰为病人就诊时咳出的痰液;清晨痰为清晨深咳出的痰液;夜间痰为就诊前一天晚睡前咳出的痰液。痰标本应以脓样、干酪样或脓性粘液样性质的痰液为合格标本，痰量为3~5毫升。
8.泌尿生殖道样本：
8.1阴道、子宫及前列腺等分泌物：由医生采集，收集于无菌试管内送检。淋病奈瑟菌检查时，不论男女尿道及子宫颈均需用拭子插入尿道及子宫颈3cm深取样送检，要避免阴道分泌物污染拭子。
8.2未成年人：若怀疑年幼女童有淋病性阴道炎时，则标本由阴道外围部位取得。
8.3男性：男性怀疑有急性淋病时，则由尿道取分泌物样本作抹片及培养，若怀疑有慢性淋病，样本可由医生采自前列腺或精囊。
8.4注意：从冰箱取出之携送培养基，须先放至室温约半小时，使其恢复室温，因淋病双球菌对温度相当敏感。
9.脑脊液样本：
9.1采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好是在应用抗生素之前采集脑脊液。 9.2采集方法：腰穿法收取脑脊液3~5ml，盛于无菌试管中，应立即送检，同时注意保温，不可置于冰箱保存。
10.粪便与直肠拭子样本采集和处理：
10.1采集时间：
10.1.1腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便; 10.1.2伤寒患者于发病2w以后采集粪便; 10.1.3怀疑霍乱时立即采集粪便送检。 10.2采集方法：
10.2.1自然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g或1～2 m1，盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(pH8.6)。 10.2.2直肠拭子法：难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约4～5cm(幼儿2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。擦取直肠表面粘液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。
11眼、耳、鼻、咽拭子培养标本：
11.1采集眼分泌物：先用无菌生理盐水冲洗眼部,然后用棉拭于拭干，再用无菌棉拭于采集分泌物。
11.2采集咽分泌物：先用清水撤口.用压舌板将舌向下向外压，将咽拭子在咽后壁或悬雍垂后侧涂抹数次，切勿接触口腔和舌粘膜。
11.3采集耳、鼻或鼻咽分泌物：直接用拭子涂抹病灶部位,切勿接触周围粘膜或皮肤。 11.4送检：标本采集过程中应注意避免粘膜上的正常菌群污染,标本采集后标明左、右眼(耳)或鼻咽部，连同拭子一起置无菌管内送检。
12.穿刺液样本：
12.1穿刺液培养标本：包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。
12.2采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2～3d采集标本。
12.3采集方法：
12.31无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本;
12.3.2标本采集量应>1ml(结核分支杆菌培养时应为l～5m1); 12.3.3标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中立即送检;
12.3.4可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固(0.5ml 肝素可抗凝5ml标本)。穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液。
13.脓汁及创伤感染分泌物标本的采集：
13.1采集要点：对采集标本部位应首先清除污垢，再以碘酒或酒精消毒，防止皮肤表面污染菌混入影响检验结果，盛放标本器皿应无菌。
13.2封闭性脓肿患者病灶局部的皮肤或粘膜表面：先用碘酒消毒，再用75%酒精脱碘，以无菌干燥注射器穿刺抽取，将采集的脓汁注入无菌试管中。
13.3开放性脓肿和脓汁分泌物：在患部附近的皮肤或粘膜用无菌纱布或棉布擦拭，供培养用的标本尽可能从深部流出，如为瘘管可在无菌操作下取组织碎片。
13.4大面积烧伤的创面分泌物：由于创面的部位不同，细菌种类也不同，故应用无菌棉拭子采取多创面的脓汁或分泌物，置于无菌试管送检。注意事项：烧伤12 小时内的创面及分泌物中细菌检出率较低。
14真菌感染培养标本采集：
14.1浅部真菌感染标本采集：
14.1.1皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检，皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织;
14.1.2指(趾)甲：消毒指(趾)指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6 片置无菌容器内送检;
14.1.3毛发：采集根部断折处，至少5～6 根送检。 14.2深部真菌感染标本采集：
14.2.1血液：无菌采血8～10 m1，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检，如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8~9h;
14.2.2脑脊液：采样量不少于3～5m1,分别注入两支无菌试管中送检(一管做真菌培养和墨汁染色一管测隐球菌抗原和其他培养) ;
14.2.4呼吸道及泌尿生殖道：其深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。
15厌氧菌感染培养标本的采集：
15.1标本采集：
15.1.1标本不能被正常菌群污染,采集时尽量避免接触空气,立即送检,严格遵守无菌操作; 15.1.2血液及其他体液(胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液等)注入厌氧血培养,立即送检; 15.1.3深部脓肿,在病灶部位开放前取材,可用针管抽取,针头用无菌胶塞密封,也可用血气采集针抽取,立即送检;
15.1.4抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气。 15.2标本运送：
152.1注意事项：标本采集后不得冰箱储存,必须尽快(半小时内)送实验室; 15.2.2运送方法:a 注射器运送(标本抽取后尽快排除空气)或接种道专门的运送培养基中直接运送;b 含运送培养基的无氧小瓶运送;c 厌氧罐运送(组织块);d 大量液体标本运送时要装满标本瓶兵立即驱氧,加盖运送;e 一般不采用棉拭子法
二 微生物检验报告的解读
1细菌室药敏试验中常选用的抗生素种类
氨基糖甙类：阿米卡星、庆大霉素 1代头孢：头孢唑啉 2代头孢：头孢呋辛钠
3代头孢：头孢他啶、头孢噻肟 、头孢吡肟( 马斯平) 单环 β-内酰胺类：氨曲南
广谱青霉素类：氨苄西林、青霉素G 、苯唑西林 抗假单胞菌广谱青霉素：哌拉西林
复方β-内酰胺类：阿莫西林-克拉维酸(奥格门丁 )氨苄西林-舒巴坦 (优力新)哌拉西林-他唑巴坦 (特治星)头孢哌酮-舒巴坦 (舒普深) 碳青霉烯类：亚胺培南、美罗培南 多肽类：多粘菌素E、替考拉宁 万古霉素 磺胺类：复方新诺明(甲氧苄唑-磺胺甲唑) 林可霉素类：克林霉素 大环内脂类：红霉素 氯霉素：氯霉素
三代喹诺酮：环丙沙星、氧氟沙星 左旋氧氟沙星、莫西沙星 四环素类：四环素 利福平
2.耐甲氧西林葡萄球菌(MRS)，
CLS I规定，葡萄球菌如对苯唑西林(或甲氧西林)耐药：对青霉素类、头孢菌素类、碳青霉烯类和含酶抑制剂的复方制剂均应报告耐药，而不考虑体外药敏结果。
3.耐高浓度庆大霉素肠球菌
CLS I规定，肠球菌引起的全身性严重感染 常联合应用 β-内酰胺类和氨基糖肽类抗生素 ， 如果肠球菌对高浓度庆大霉素耐药，则联合用药无效
三 与临床沟通中常见的问题
• 为什么微生物的报告时间这么慢? • 为什么培养回报有细菌而病人情况良 ? • 为什么送检的是脓痰却没有阳性结果 ? • 培养阳性的细菌都需要用抗菌药物治疗吗? • 选择药敏报告敏感的药物，为什么临床治病无效?
1.为什么微生物的报告时间这么慢
微生物的工作流程
细菌培养：接种标本，培养24~48小时
分离标本： 24~48 小时(需要时)
药敏： 18~24 小时 发结果： 阴性48小时
阳性?
真菌培养:因为生长缓慢，时间更长
2.涂片镜检结果与培养结果不吻合?
涂片镜检是报告所有检见的细菌，而培养的目的是检出致病菌。一些苛氧菌需在特殊的环境或培养基上才能生长。
3.尿培养结果报告“三种以上细菌混合生长”代表什么?
泌尿系统感染一般为一种细菌，有时可能有二种，但培养出三种或以上细菌说明标本污染，需要重新留取标本再做培养。
4.为什么培养回报有细菌而病人情况良好?
抗菌药物使用 或定植菌或污染菌
5.为什么送检的是脓痰却没有阳性结果?
5.1 是否送检前使用抗生素
5.2送检是否及时，痰涂片可能帮助判断 5.3 并不是感染性疾病，比如慢怚肺 、老慢支 等 5.4实验室操作不规范
6.为什么化脓性感染病灶中取脓汁培养阳性低
脓液是由坏死的组织和吞噬了细菌而死亡的白细胞组成，都是无任何营养的物质，而细菌一般都需要在高营养的环境中才能生长，另白细胞释放的溶菌酶对细菌有杀灭作用，因此，在脓液活细菌较少。 将脓液挤干净后在肉芽生长处取标本送检，如果化脓性病灶尚未破溃， 要用注射器穿刺到一定深度(肉芽附近处)取标本送检 。
7.明显稀便，培养结果为何正常 ?
大便普通培养，通常只能鉴定志贺菌、沙门菌感染，致病性大肠杆菌。 怀疑霍乱时，需开霍乱弧菌培养。 可能病毒感染(轮状病毒 轮状病毒) 8培养阳性的细菌都需要用抗菌药物治疗吗?
8.1.培养阳性感染：可能为污染菌 (血培养)， 可能为定植菌(痰)， )，任何结果必须结合临床情况进行评价-很重要
8.2.感染部位的清创，引流，换药比使用抗菌药物更重要
8.3.改善患者全身情况，器官功能支持，纠正酸碱电解质紊乱，低蛋白血症，高血糖等
9选择药敏报告敏感的药物为什么治疗无效?
9.1体外药敏试验只能预测体内治疗效果，并不完全等同 9.2.可能不是真正的致病菌 (污染或定植) 9.3.细菌本身因素(如诱导耐药 ，生物被膜)
CLSI中提示：部分细菌3天内即可发展为耐药， 临床治病34天后，应重新分离细菌做药敏试验
9.5感染部位与药代动力学因素 给药剂量与用药方式 ：时间依赖性、浓度依赖性、 抗生素后效应、特殊人群等因素。
9.6.感染原发灶 药敏试验仅报告细菌对药物的敏感性，但不同部位的感染，因根据药物浓度分布选择抗菌药物，药物剂型和生物利用度(纯品，商品)
10.是否能将所有的药都做药敏试验
10.1没有必要：通过耐药机制和标志性药物可以预测其他抗菌药物的敏感性，
抗生素的等效性：是指用一种相关抗生素的试验结果预测同类抗生素体内抗菌活性。此特性允许检测少数几种抗生素而不影响临床对其他抗生素的广泛选择，试验的药物代表一类 药，而不是一种药。
如对肠杆菌头孢噻吩与其他一代头孢具有等效性， 可用头孢噻吩结果预测其他一代头孢。 10.2.没有可能：不是所用药物都可以做药敏试验(需要药物在体外稳定，需要有操作标 准和解释标准)有些细菌对某类抗生素天然耐药， 则不需要做药敏试验 比如：嗜麦芽窄食单胞菌对碳青霉烯类天然耐药， 治疗首选复方新诺明。
11.鉴定结果明明写着四联球菌、 革兰氏阳性杆菌，为何没有药敏结果?
四联球菌为微球菌，一般不引起人体致病， 为非致病菌，故考虑污染可能。 药敏结果参照CLSI标准，目前革兰氏阳性菌没有参照标准，故暂不能做药敏试验， 若需治疗可参照阳性球菌用药。
12.药敏试验报告中MIC越小的抗菌药物效果越好?
感染菌对同一种药物的MIC越小，效果越好 ，不同种抗菌药物之间 MIC无可比性，目前很多仪器报告的是检测折点，而不是真正的MIC 四 对临床的要求
临床医生应为实验室提供有用的临床信息，以便实验室有针对性地对可能的病原体进行鉴定。 临床医生对药敏测定方法和微生物学知识有一定的了解，以更好地理解药敏试验报告中验报告中 S、I、R临床意义，以及体内、体外药敏不一致的现象。 增强特殊标本的微生物送检的意识，提高诊断的阳性率。
五 呼 吁
1.请尽量在早上送检标本 2.请正确留取痰标本
3.请正确填写标本部位及名称
4.血培养-感染性疾病的病原学诊断有效手段 5.个别特殊病历多沟通，
临床常见标本采集范文第3篇
1.操作者先洗手或用手消毒剂喷雾后揉搓待干;2.根据受检者检验项目选择真空采血 管;3.在穿刺点上方约6cm处系紧压脉带，嘱受检者紧握拳头，使静脉充盈显露，进行皮肤消毒;4.取下双向采血针头无菌帽，以左手拇指固定静脉穿刺部位下端，右手拇指和食指持采血针柄，使针头与皮肤呈30°角沿静脉走向快速刺入皮肤，然后呈5°角向前刺破静脉壁，进入静脉腔。见回血后，将针头顺势深入少许即可;5.将采血针的另一端刺入所需的真空采血管盖中央的胶塞中，血液自动流入试管。如需多管血样，将松开压脉带，嘱受检者松拳，用消毒干棉球压住穿此处，快速拔出针头，嘱受检者按压局部数分钟;6.取下采血针放入利器盒，将所采血样分别贴上相应的条码，抗凝血需立即颠倒混匀，及时送检。
二、动脉血气标本的采集
1.受检者取坐位或卧位，休息5min，应正常呼吸，避免憋气及过度通气，以免影响检 查结果;2.选择动脉血管后，常规皮肤消毒，用动脉采血针(内有肝素)垂直刺入血管，针管自动吸入0.5ml后，用消毒干棉球压住穿刺处快速拔出针头。局部按压5min以上，防止血肿形成;3.拔出后立即将针头用橡皮封闭，隔绝空气。随即挫动注射器，使血液与肝素充分混匀，立即送检。送检过程中要防止针头橡皮脱落，造成空气直接进入注射器。如有不慎脱落，必须如实向检验人员说明情况，并告知临床医生，以免影响检验结果和临床诊断。如确因不能及时送检，可将标本短时间内保存于4℃冰箱中。
三、生化检验标本的采集
注意病人生理因素对检验结果的影响，如年龄、性别、体型、情绪、运动、体位改变等。研究表明，CH、ALP、UA等项目易受年龄的影响，性激素的测定男女差别巨大。受情绪影响较大的项目有GLU、GH、CA、Cor、PRL等。另外，血清中CH、ALB、ALT、ALP、AST、TG、AMY及血清Ca等项目受体位改变因素影响较大。还应注意饮食对测定结果的影响，包括病人是否真正空腹及不进流食。空腹一般控制在12—16h最佳，过长或过短对某些测定结果可产生影响，如GLU、BUN、CR、ALB、UA、TG、电解质、肝功能等。个别项目需病人控制饮食，如血脂测定前最好连续素食3天，以防产生假性结果。注意药物对测定结果的影响，目前以证明至少有100多种药物对多项生化检验结果有影响，如利胆剂可使血清CH升高;肝素使血清CH降低，APTT显著升高，大剂量的维生素C对氧化酶法测定血清GLU有负干扰，CH、TG的Trinder反应产生负干扰，咖啡因造成血GLU、CH增高，冠心平导致血清中TG和LDH增高，大剂量青霉素可使血清CK、ALT、CR升高而BIL降低等。尽可能在标本采集前2d停服药物，却因治疗需要无法停药者，应在检验申请单上注明用药种类和剂量，以备参考。
此外，对采样时间要求严格的检验项目，应详细告诉病人真确记录时间，何时采取标本等事宜，如24h尿蛋白和电解质测定，糖耐量试验等。对于如激素易受生理因素影响的项目，需多次测定时，最好选择每天的同一时间采样，以便减少昼夜变化的影响，便于比较和分析。
四、葡萄糖耐量试验标本的采集
OGTT检查前三天停用胰岛素、肾上腺皮质激素等药物，可正常饮食(每天碳水化合物量一般控制在250—300g)。试验前一天晚上餐后不再进食(空腹8—124h)。标本采集后应立即送检，切忌不同时间点的多份标本采集后一起送检。
五、血液流变学标本的采集
采集前三天停用具有溶栓抗凝作用和降脂的药物，女性避开月经期。采集前空腹12h以上，前一天晚上低脂饮食，患者处于静息状态。避免在输液过程中采血，禁止在输液手臂同侧采集血液，抽血时病人取坐位肘部静脉采血。采血后立即送检并检测，最好在4h内完成，存放于4℃冰箱可延长至12h.血样不宜在0℃以下存放，以免RBC发生破裂。
六、疟原虫标本的采集
间日疟及三日疟患者应在发作后数小时至十余小时采血为宜，恶性疟患者应在发作开始时采血。怀疑疟疾的患者一次检查阴性应多次复查，必要时骨髓涂片检查疟原虫。采集的静脉血标本应尽快送检，标本应及时制成学膜片。血膜片可于室温中保存，尽早检查。
七、微丝幼标本的采集
以晚上22时至次日凌晨2时病人从睡眠中醒来后，立即采血为宜。如夜间采血确有困难的病人可采用诱出法，即在白天口服海群生2~6mg/kg体重，15~30min后采集血液。采用试管浓集法：取含有0.4ml枸橼酸钠的真空试管(黑色盖子)，采集静脉血2ml注入试管，轻轻颠倒混匀6~8次，防止标本凝固。标本采集后应尽快送检，并及时制成血膜片尽快检查。检验后的剩余血液可以放在冰箱保存3d
八、乳酸测定标本的采集
检测前三天，待检者不要做剧烈运动，抽取标本前禁食12h.。在患者处于安静状态后2h采集标本，并嘱患者不可用力握拳。
九、血药浓度监测标本的采集
对于治疗药物的检测，应根据药代动力学选择服药后的最适时间抽血检测。欲了解药物的长期效应，通常在药物的第5个半衰期(药物的稳定期)采血;欲了解药物的峰值效应，通常在用药1~2h采集(地高辛和毛地黄毒苷为6~8h)。
十、激素检测标本的采集
许多激素在一天24h内的分泌量不同的。如可的松在血液中的峰值为早晨4~6时，GH、LH和FSH均以阵发性方式释放。在测定此类激素时，有必要采集连续时间间隔的数份血标本，以其中间值为测定值;而血清中肾素活性在体位由卧位变为站位时，将出现明显增高。ACTH分泌峰值期在6~10时，低值期在0~4时，波动幅度为150%~200%。妇科激素采血前建议静坐30min，标本采集前需要停止类固醇药、甲状腺素、ACTH、雌激素或性腺激素的治疗，否则会影响检测结果。抽血检查时患者和医生应准确把握月经周期，以便解释检验结果。
十一、尿液分析表本的采集
患者留取标本前24h禁止服用维生素C等药物，勿食深色素食物。禁服磺胺类药物，禁止加甲醛等防腐剂。嘱患者清洁尿道口及周围皮肤，防止粪便、清洁剂、粉剂、油类及有色物质等污染尿液。最好留取晨尿或“二次晨尿”(清晨排空膀胱，空腹收集2h的尿液)，也可随时留取中段尿，尿量不少于10ml。尿标本2h内送检，避免强光照射。
十二、尿三杯试验标本的采集
取尿杯3个，标明
1、
2、3。于清晨第一次排尿时，分为三段排于3个尿杯中，每杯不少于5ml。第一杯留取最前段部分尿液，第二杯留取中段尿液，第三杯尽量留取最后段部分尿液。注意尿液要一次性排出，中间不可间断，留尿后立即送检。
十三、尿红细胞位相标本的采集
留取标本前病人按常规尿检准备。留取早晨第一次尿的中段尿(晨尿)10ml于洁净容器中(必要时清洗外阴)，2~8℃冷藏保存。早上8时到检验科时，留取新鲜的中段尿10ml于洁净容器里(必要时清洗外阴)，两次留取的尿液一并及时送检。注意留尿前不要喝大量的水(B超以后的尿不能用)且保证尿样不受污染(女性以避开行经期)。
十四、24h尿蛋白定量标本的采集
留取标本前病人按常规尿检准备。准备一洁净、无污染的干燥盛尿大容器，从检验科领取5ml甲苯作为防腐剂。具体步骤：1.在收集标本的第一天(如早晨7时)，病人排空膀胱中的的尿液，弃去不要。此后，连续收集24h的全部尿液排入大容器中。留取第一次尿液时把5ml甲苯一并倒入;2.在结束收集标本的第二天(如早晨7时)，病人排空膀胱中的尿液，收集于盛尿容器里;3.准确测量并记录总尿量;4.充分混匀全部尿液，取出约5ml于常规尿管中，贴上标识，送检验科检测，其余尿液弃去不要。注意24h留尿完毕后，须将全部标本充分混匀，准确记录尿量，再取出约10ml检测标本。
十五、大便常规标本的采集
必须使用洁净、干燥、无吸水性的的容器，禁止用棉拭子、纸巾、纸盒等留取或存放。尽量选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便，外观无异常的粪便必须从表面、深处和粪端多处获取标本。检查绕虫卵时，需用软黏透明纸拭子，在清晨排便前自肛门周围拭取标本，也可用棉拭子拭取，但必去立即送检。检查痢疾阿米巴滋养体，应于排便后迅速送检，立即检查。冬季采取保温措施。
十六、精液常规标本的采集
检查前禁欲(性生活、手淫及遗精)3~7d，已明确精子形成低下时，应禁欲7d后再收集标本。排精次数与禁欲时间可能对检查结果产生一定的影响，有报道禁欲时间过长，精液量虽然增多，但精子活力有所下降。留取标本前排净尿液，必要时清洗外阴部。用手淫或其他的方法，将一次射出的全部精液收入洁净、干燥的加盖容器内，有报道分布射精收集的各段精液分析中，最前段精液中精子的密度最高，以后各段渐依次减少，故精液采集时应收集全部标本。勿使用可能被酸碱污染或对精子产生影响的容器，乳胶或避孕套内含有抑制精子活力的滑石粉，应禁止使用。标本送检时需正确注明采样时间，30min内保温送检。精液常规检查如果出现一次异常结果，应隔1周后再复查，连续检查2次至数次，间隔应大于7d不能仅凭一次检查结果作出判断。
十七、常见临床微生物标本的采集
微生物检验工作的成败除了实验室的能力和效率外，很大程度上要看标本采集和送检环节的质量。由于标本的采集和处理不当，可能造成检验结果的假阳性和假阴性。因此微生物标本的采集应遵循如下原则：1.尽量在抗菌药物使用前采集标本。采集标本前应至少停药3d.如病人不能停药，应在下次抗生素使用前采集。2.标本采集时，应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌的污染。3.标本采集后应立即送至微生物实验室，放置时间过长会影响检验结果。如不能立即送检，一般应放2~8℃冷藏的条件下保存(血液培养采集后若不能及时送检，可于室温保存)。某些菌种(淋病奈瑟均、脑膜炎奈瑟菌、嗜血杆菌、肺炎链球菌等)。不仅要及时送检，而且再送检的过程中要注意保温。4.盛标本的容器必须经灭菌处理(到微生物实验室领取)，但不得使用消毒剂和酸类剂处理，以免残留物影响细菌的生长。送检时，标本切勿污染容器的瓶口和外壁，防止污染和传播。5.送检标本应注明标本来源和检验目的，以正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。 1. 血液及骨髓标本的采集：
采血的部位多为肘中静脉，疑为亚急性细菌性心内膜炎时，以肘动脉和股动脉采血：为宜。切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采血。采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒。血培养瓶不用时放常温即可，不必放在冷藏室。
采血次数及间隔时间：急性发热性疾病(如脑膜炎、细菌性肺炎等)需尽快进行抗菌治疗。急性骨髓炎、化脓性关节炎等需要紧急手术的患者，立即从两臂分别采取2份标本。对感染性心内膜炎的患者再24h内采血3次，每次间隔不少于30min，必要时次日再作血培养2次。对发热原因不明者两次抽血间隔为60min，必要时于24~48h后再抽血2次。国外资料统计，1次血培养菌血症的检出率为80%，2次可达90%，3次可达99%.每次采血量成人5~10ml，婴幽儿为1~2ml。培养基：血液为10：1，以稀释血液中的抗生素、抗体、补体、溶菌酶等杀菌物质。有人主张对于长期接受抗菌药物治疗的病人，培养基：血液应大于20：1.骨髓一般采集1~2ml 血标本的采集和培养各环节必须严格无菌操作，以免发生标本的污染。同时，不可将血培养中出现的不常见细菌或一些皮肤表面的正常细菌随意的判断为污染菌。因为对一些大量使用抗生素、免疫制剂以及机体免疫力降低的病人，条件致病菌或非致病菌均可引起菌血症、败血症。两次血培养结果为同一种细菌，患者2~3周后血中抗体效价明显升高，应该作为菌血症的病原菌处理。
厌氧菌培养应作为血培养检查的常规方法，特别是疑为厌氧菌感染者。同时还必须注意L型细菌的培养。 2. 脑脊液标本的采集：
对患者进行腰椎穿刺，采集脑脊液3~5ml，盛于无菌试管和血培养瓶中送检。脑脊液标本尽量在抗生素治疗前采集，穿刺过程中应严格无菌操作，防止污染。由于脑膜炎奈瑟氏菌离体后容易自溶，流感嗜血杆菌及肺炎链球菌容易死亡，故标本采集后应立即送检微生物实验室。脑膜炎奈瑟氏菌等许多细菌对外界抵抗力比较弱，应注意保暖、防止干燥和日光直射。为防止采集的标本浑浊，最好进行“床边接种”，否则影响培养的阳性率。为了提高细菌的培养的阳性率，可在接种血平板、巧克力平板的同时，接种血液增菌培养基。 3. 尿液标本的采集：
中段尿采集法是临床最常见的采集方法，以晨尿为宜。女性病人在采样前应先用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口：男性病人翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口。对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用针管的细针头斜穿入管壁采集尿液：或拔去闭式引流的集尿袋，弃去导尿管前端的尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。切忌直接从集尿袋的下端关口留取标本。
确定菌尿是来自肾脏，可通过尿管采集肾盂尿。充分冲洗膀胱，以最后一次冲洗尿作为对照，然后将导尿管插入输尿管，做好左右标记，收集3次尿液。如果尿管细菌数比对照尿细菌数多或第三次尿比第一次多，则该细菌可能来自肾脏：相反，第一次尿菌数多余第三次尿菌数，则可能来自膀胱。 尿厌氧菌培养或儿童婴幼儿的中段尿留取困难，必要时可经耻骨上穿刺收集无污染的膀胱内尿液。厌氧菌的培养尚需在取得尿液后，针头插于橡皮塞上立即送检。
尿液标本采集和培养最大的问题是杂菌污染，所以应严格无菌操作。耐心细致的向病人说明如何留取中段尿。室温下，尿标本耽搁稍久可致尿内的细菌明显增高，影响病原菌和污染菌的区分。不能立即送检者，可暂时放4℃冰箱保存，但不能超过8h。此外，应在用药前或停药3d后采集尿液，因为治疗所用药物多数均通过尿液排泄。尿液标本不得加入防腐剂和消毒剂，否则影响细菌的培养结果。 4. 下呼吸道标本的采集：
合格痰标本的采集是取得正确检验结果的关键。临床微生物工作人员应耐心指导患者如何采集标本，要求采集肺深部的痰液(不是唾液)，一般以晨痰最好。清水反复漱口后用力咳嗽，从呼吸道深部用力咳出新鲜的痰液于无菌容器内送检(尽可能的减少口腔正常菌群的污染)。痰量少者，可用4℃10%NaCL溶液雾化吸入导痰。
支气管扩张症或支气管有相通的巨大空洞的患者，清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰液;对咳嗽乏力和昏迷病人，可用吸痰管经鼻腔或口腔抵达气管内吸引痰液;用纤维支气管可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌，但应避免咽喉部正常菌群的污染;双侧肺部感染伴人工气道(如气管切开或气管插管)的患者，可用吸痰管经人工气道插至叶支气管水平吸引痰液;对重症、难治、有免疫缺陷或因厌氧菌引起的医院内肺部感染，必要时可采用环甲膜穿刺经气管吸引(TTA)、经胸壁穿刺肺吸引(LA)经纤维支气管或人工气道作防污染双套管毛刷(PSB)或防污染支气管肺泡灌洗(PBAL)，采集无口咽部菌群污染的痰液，进行精确的感染病原学诊断。
痰液标本不能及时送检者，可暂置4℃冰箱存放。如室温下耽搁数小时，使定植于口咽部的正常菌群过度生长，肺炎链球菌、嗜血杆菌等苛氧菌的检出率将明显下降。 5. 咽拭子及鼻咽拭子标本的采集：
咽部是呼吸和食物的通道，晨起采集最好。医生采集标本时应戴口罩和手套，以防传染。病人先用清水漱口，由检查者将舌向外拉，使悬雍垂尽可能向外牵引，将咽拭子越过舌根，到咽喉壁或悬雍垂的后侧反复涂抹数次，避免接触口腔和舌黏膜，尽可能减少污染。检查脑膜炎奈瑟氏菌或白喉棒状杆菌时，如咽部有明显发红或有伪膜存在，应在局部涂抹取材后，小心地将棉拭子立即放入无菌管中。对局部无病变或带菌者检查，应于咽部或扁桃体上用棉拭子涂抹。采集扁桃体部位的标本时，应以小窝为宜;高度疑似白喉时，应在咽喉部深层组织中采集标本，而表面渗出液多为类白喉棒状杆菌和葡萄球菌。标本的采集虽然在时间上无严格控制，但最好在抗生素治疗前采集。采集前数小时不得用消毒药水漱口或涂抹病灶居部。标本采集后应立即送检。因为苛氧菌(如肺炎链球菌、嗜血杆菌、卡他布兰汗菌)离开人体后容易死亡。
6. 化脓及创伤感染标本的采集：
对采集标本的部位，应用无菌生理盐水洗净病灶表面的污染菌，对皮肤粘膜充分消毒。采集标本前，病灶部位应避免使用抗菌药物和消毒剂。如果局部伤口已用磺胺类药物和抗生素治疗，则应在培养基内加入相应的物质(如青霉素酶、对氨基苯甲酸等)，以提高细菌培养的阳性率;创面出血敷用药物2h以内，烧伤在12h内，不应采集标本，此时细菌培养阳性率较低。
开放性脓肿及脓性分泌物的采集：首先用无菌生理盐水擦洗病灶表面。用无菌棉拭子采取脓液及病灶深部的分泌物，置培养基送检。如为瘘管，应在无菌条件下采取组织碎片于无菌试管中送检。
闭锁性脓肿的采集：对病灶周围的皮肤及黏膜表面先用2.5%~3.0%的碘酊消毒，再用75%的酒精脱碘，用无菌注射器穿刺抽取内容物立即送检。疑为厌氧菌感染时，取材后立即排空注射器内空气，同时将针头插入橡皮塞中立即送检。
大面积烧伤创面分泌物的采集：由于创面的部位不同，细菌的种类也不同，应用无菌棉拭子采集多部位的分泌物，分别送检。有时也可将浸有脓液的最内层敷料放入无菌平皿内送检，或放入无菌肉汤中送检。
对怀疑放线菌感染的标本，常用无菌棉拭子挤压瘘管，选取流出脓液中“硫磺样颗粒”，盛于无菌试管中送检;或将无菌纱布条塞入瘘管中，次日取出送检。
标本采集后应立即送检，否则应放冰箱保存，以防杂菌污染。另外采集标本时应注意观察分泌物的形状、颜色及有无恶臭味等，作为培养和鉴定提供依据。 7. 粪便标本的采集：
大多采用自然排便采集法，即排便后，挑取有脓血、黏液、糊状、米泔样等性状异常部分的粪便，盛入无菌广口瓶中送检。不能立即送检者应放入Cary-Blair运送培养基中保存。对不易取得粪便或排便困难的患者或婴幼儿，可采用直肠拭子采集法。将拭子前端用无菌甘油水湿润，，插入肛门4~5cm处(幼儿2~3cm)，轻轻旋转擦取直肠表面的黏液后退出，置培养基中送检。腹泻病人应尽量在急性期用药前采集(3d以内)。以提高细菌培养阳性率。怀疑厌氧菌感染(主要是艰难芽孢梭菌)时，最好排便后立即培养。尽管粪便标本中有很多杂菌，但采集时也应放入无菌瓶中送检，以免影响致病菌的分离及误诊。在不得已时可将粪便至于无菌容器内4℃保存，但不能超过24h.不能采用冷冻-20~-80℃保存，会使活菌数量显著减少。
8. 胆汁的采集：
无菌操作，有专职医师用导管做十二指肠引流，采取的胆汁分为A、B、C三部分。A液来自总胆管，橙黄或金黄色;B液来自胆囊，黄绿色;C夜来自肝胆管，柠檬色。因引流是导管通过口腔，易污染口腔中的正常菌，一般认为B液适宜做细菌培养。行胆囊造影术，可同时采集胆汁，即胆囊穿刺法。另外，在进行胆囊及胆管手术时，可由总胆管、胆囊直接穿刺采集胆汁。这两种操作方法不易污染，适宜作细菌培养。采集标本后立即送检，否则应放入4℃冰箱保存。由于胆汁细菌培养阳性率较低，在接种血平板及其他平板的同时应接中肉汤培养基增菌，待肉汤浑浊后再转种相应的平板，以提高培养阳性率。
9. 穿刺液标本的采集：
穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液等，由临床医师行穿刺术抽取。标本的抽取，在病人用药前或停药1~2天后行无菌操作，防止污染。胸腹水可抽取5~10ml，心包液、关节液、等抽取1~5ml，放入无菌瓶或肉汤曾均培养基中，混匀后立即送检。不能立即送检的可暂时置于4℃冰箱保存。怀疑厌氧菌感染时，抽取后立即排空注射器内空气，针头插入橡皮塞中立即送检或床边接种。
10. 生殖道标本的采集：
生殖器官是开放性器官，采集标本过程中应严格无菌操作，减少杂均污染，根据不同的感染类型及病变特征采集不同的标本。采集尿道标本时，应用无菌生理盐水局部冲洗，以无菌拭子插入尿道口1~2cm停留10s，轻轻旋转拭子后退出;对外阴部糜烂、溃疡者，生理盐水冲洗后用无菌拭子擦去病灶边缘的分泌物;阴道及尿道口的分泌物需在窥阴镜下，用无菌长棉拭子采集，子宫内分泌物用无菌导管抽取，导管外套一层保护膜，插入子宫过后再穿刺该膜，负压吸引，可减少阴道菌群的污染，女性盆腔脓肿时，在阴道局部消毒，由直肠子宫凹陷处进针抽取。前列腺液的采集皮肤消毒后，有临床医师行前列腺按摩采集。怀疑淋病奈瑟氏菌感染时，由于其抵抗力差且有自溶性，标本采集后应立即送检，或床边接种，以提高细菌培养阳性率。阴道内有许多正常菌群，采集宫颈标本时，应尽可能不触及阴道壁。生殖道厌氧菌感染也多见，采集标本时应避免与氧气接触，应作床边接种或置厌氧运送培养基中送检。
十八。其他特殊项目的标本采集
肿瘤标志物组合，避免产生大量气泡和用力振荡试管而造成标本溶血。若检测PSA，采血前48h内不得作前列腺按摩、前列腺指诊、穿刺、灌肠、直肠指诊、直肠内超声和膀胱镜检查等，否则会使测定结果偏高;检测β-HCG时，若使用激素类药物，应在送检单上注明，怀孕或流产后检测HCG时最好也要注明;甲状腺功能检测抽血时宜用酒精消毒(不可用碘酒或碘伏);微量元素标本才几千患者应出入静息状态，避免剧烈运动和情绪激动。
标本的输送、验收与拒收 一.送检
送检人员受到样本后，须在各病区护士站LIS系统中将接受到的标本进行条码确定。标本送到检验科后，在检验科LIS系统中，检验人员将送检到的标本条码接受。正常作息时间内的急诊标本，由护工送至各专业组，并进行验收登记;夜间值班时的急诊标本，由护工将标本送至急诊检验室，由值班人员进行核对、接收、登记和处理，对不合格标本与临床联系后拒收和回退。标本收集人员必需清点标本个数是否与送检单相符，并安全送到检验科。送检过程中要注意环境对标本的影响。有时应避光(如阳光直射下血中胆红素会分解)，样本有温度要求，应确保样本置于适合的容器内。要保证标本运送途中的安全，防止过度震荡，标本被污染，唯一表示的条码丢失和混淆，标本对环境的污染，水分蒸发等。对于疑有高致病性病原体标本，应按《病原微生物实验室管理条例》的相关要求运送。同时，由于血细胞的代谢、气体交换及物质转移等因素，标本放置时间过久，易使血细胞内外多种成分发生变化，导致分析结果发生误差。因此标本采集后应及时送检，有些检测项目的标本(如血气分析)应立即送检。晨起批量标本采集，各临床科室应充分考虑采样与送检之间的间隔时间，一般要求在上午上班前送达相应实验室。 二.验收
标本送至实验室后有专人验收，验收基本程序：1.唯一性标识是否正确无误;2.申请检验项目与标本是否相符;3.标本容器是否正确，有无破损;4.检验标本的外观和标本量，包括有无溶血，血清有无乳糜状、抗凝血中有无凝块，，以及细菌培养的标本有无污染的可能;5.检查标本采集时间到接收时间的间隔;6.特殊标本需要送收双方签收。 三.拒收
遇到下列情况检验科可以拒收标本：1. 唯一性标识错误、不清、涂改、脱落和丢失，标本标识码与申请单或采样清单不一致;2.用错标本容器(如用错真空采集管)或容器破损难以补救;3.人为因素的严重溶血、脂血标本;4.抗凝血中有凝块，抗凝血未加抗凝血剂或血液与抗凝剂比例不正确(如血沉、抗凝因子测定等);5.标本量严重不足;6.不应接触空气而接触了空气(如血气分析)，细菌培养的标本被污染;7.采集标本离送检间隔时间过长。
正确标本采集应注意的问题
选择最佳采样时间，采集具有代表性的标本。
容器洁净度或无菌程度符合检验要求。注意抗凝剂、防腐剂的正确应用，防止污染。如细菌培养的容器绝对不能有防腐剂，微量元素测定对容器结晶要求远高于其他检测，24h或12h尿中某些成分分析需加防腐剂等。
静脉采血时扎止血带时间应尽可能短(一般不超过1min)，抽血速度不宜过快，以免产生大量泡沫，造成标本溶血。防止过失性的采血(如采错部位、用错真空管等)，防止边输液边采血，禁止在输液同侧采血。含抗凝剂的真空试管采血后须及时混匀标本(轻轻点到混匀切忌用力振荡试管)，防止凝块和凝固。
需要毛细血管末梢采血时，由检验人员采集。皮肤消毒后，一定要待酒精分发干燥后采血，否则血液四处扩散而不成滴。采血时应选取无炎症、水肿、冻疮等部位，烧伤患者选择皮肤完好处采集，除特殊情况外，不要采集耳垂血。穿刺深度一般为2.0~2.5mm为宜，切忌用力挤压或离伤口较近处挤压，否则会使大量组织液渗出稀释血液，同时易激活凝血系统使血液凝固。
标本严重脂血和黄疸问题：严重脂血可干扰某些光谱反应。如影响肝功能、血脂等项目测定;黄疸产生光谱干扰苦味酸法测定Cr，造成Cr检测结果偏低。
不同试验项目在使用抗凝剂时，注意与样本的比例：如血GLU测定一般加入氟化钠—草酸钠混合抗凝剂，防止糖酵解;肾功和电解质等常使用肝素抗凝;病理性腹水、胸水和脑脊液应加入肝素，防止蛋白质凝固;24h尿PRO等生化测定则应加入甲苯等防腐剂，抑制微生物生长繁殖。凝血功能血样试管中的抗凝剂与采样量有严格的比例要求(1：9)，差别过大显著影响检验结果。